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• • 如何分析外泌体纯化质量？

  外泌体（Exosomes）是一类直径约30–150 nm、由多种细胞分泌的细胞外囊泡，广泛参与细胞间通讯与病理调控，特别在肿瘤、神经退行性疾病和免疫学研究中具有重要价值。然而，不同的提取方法如超速离心、聚合物沉淀或尺寸排阻层析，常常带来蛋白杂质、脂蛋白或非外泌体EVs共存，可能严重干扰下游分

• • 如何在纯化后验证外泌体完整性？

  外泌体（Exosomes）是由细胞通过内吞分泌途径形成的纳米级囊泡，广泛存在于血浆、尿液、唾液、乳液等多种体液中。它们在细胞通讯、疾病标志物筛选及药物递送等领域展现出巨大应用潜力。然而，外泌体功能的研究基础是确保其结构与生物学完整性，否则可能导致实验数据偏差甚至结论错误。因此，建立一套科学、

• • 如何在不降低产量的情况下提高外泌体纯度？

  外泌体（Exosomes）作为细胞间信息传递的重要媒介，近年来在肿瘤生物学、神经退行性疾病、液体活检及药物递送等领域展现出巨大潜力。然而，外泌体的生物功能极易受到杂质干扰，如游离蛋白、脂质体、细胞碎片等非特异性成分，这对下游组学分析、功能验证乃至临床应用构成严峻挑战。常规分离方法在追求高纯度

• • 如何高效纯化外泌体：超速离心、SEC 与免疫亲和方法对比

  外泌体（Exosomes）是来源于多种细胞类型的小囊泡，广泛存在于血浆、尿液、唾液、乳液及细胞培养上清中，作为细胞间信息传递的重要媒介，近年来在肿瘤早筛、疾病标志物发现及递送系统开发中受到科研和产业的双重关注。然而，正因为其体积微小（30–150 nm）且与其他细胞外囊泡（如微泡、凋亡小体）

• • 如何选择合适的抗体用于Co‑IP实验？

  在生命科学研究中，蛋白质-蛋白质相互作用（PPI）的解析对理解细胞信号转导、疾病机制乃至药物靶点筛选具有重要意义。作为PPI研究的经典方法，共免疫沉淀（Co‑Immunoprecipitation, 简称 Co‑IP）因其操作相对简便、特异性强而被广泛采用。然而，Co‑IP 实验的成功与否，

• • 靶向和非靶向代谢组学有什么区别？

  在生命科学研究不断深入的今天，代谢组学（Metabolomics）作为解析生命活动最直接的“终极产物”分析技术，正日益受到科研人员的重视。它以代谢物为研究对象，全面描绘细胞、组织或体液在特定生理或病理状态下的动态代谢图谱。随着高分辨质谱技术的发展，代谢组学已广泛应用于肿瘤代谢机制研究、药物代

• • 如何利用 LC-MS 分析亚细胞蛋白转位？

  细胞不是静止不变的结构，而是充满动态调控的复杂体系。在多种生理或病理状态下，蛋白质会在细胞内不同亚细胞区室间重新定位，即发生亚细胞蛋白转位（subcellular protein translocation）。这种转位不仅反映了蛋白功能状态的改变，也直接参与信号转导、代谢调控、细胞周期、凋亡

• • 如何使用质谱准确测定蛋白质分子量？

  蛋白质是细胞生命活动的核心功能分子，其分子量直接反映其氨基酸序列和结构完整性，是蛋白质鉴定、功能预测、质量控制等研究的关键参数。在生物医药领域，蛋白质分子量的细微变化常常代表着翻译后修饰（如糖基化、氧化）或降解产物的出现，对药物研发与质量放行具有重要意义。因此，建立一种高精度、高灵敏度且适用

• • 如何溶解疏水性膜蛋白而不影响其质谱分析？

  疏水性膜蛋白在细胞生理过程中发挥着关键作用，广泛参与信号转导、物质运输和细胞识别。然而，这类蛋白质因其高度疏水的跨膜结构域，在质谱分析前的样本前处理阶段面临极大挑战。常规裂解缓冲液难以有效溶解这些膜蛋白，导致其提取效率低、易聚集沉淀，甚至干扰胰蛋白酶酶解和质谱离子化过程。要实现疏水性膜蛋白的

• • 如何设计一套高效的Co‑IP实验方案？

  共免疫沉淀（Co-immunoprecipitation, Co‑IP）是研究蛋白质–蛋白质相互作用的经典方法，广泛应用于信号通路解析、靶点验证及药物机制研究中。通过特异性抗体富集目标蛋白及其复合物，再结合Western blot或质谱技术进行检测，Co-IP能够有效捕捉细胞内天然状态下的蛋