蛋白分析FAQ汇总
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• 请问同时在一块胶上跑还原SDS-PAGE和非还原SDS-PAGE有影响吗?
不推荐同时在同一块胶上跑还原(reducing)SDS-PAGE和非还原(non-reducing)SDS-PAGE,主要原因如下:
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• 请问WB没加loading放进-80可以保存多久?膜蛋白是不是不能煮样,难道每一次都要bca吗?
WB样品未加loading buffer放-80°C,短期(1-2周)可行,长期不推荐。膜蛋白一般不建议煮沸,可用低温孵育或温和裂解法。BCA蛋白定量建议每次都做,除非实验条件极其稳定。以下为详细解释:
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• 我现在需要检测8种多肽,每条多肽氨基酸数量在16-38,暂时没有发现有人测过,请问有什么合适的方法吗?
检测8种多肽(氨基酸长度16-38),如果没有文献先例,可根据你的实验需求(定性 or 定量、灵敏度、通量等)选择合适的方法。以下是推荐的几种主要检测方法:
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在进行质谱分析之前,样品通常需要经过凝胶电泳(跑胶)分离以去除杂质和富集目标蛋白。下面是一个关于如何跑胶以进行质谱分析的详细步骤指导。
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在质谱跑胶(SDS-PAGE)实验中,为了确认蛋白是否跑到分离胶,可以采取以下方法:
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在 Western Blot (WB) 实验中,如果蛋白提取后未进行离心,但需要暂时保存,建议按照以下方式操作:
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• 请问非还原SDS-PAGE上样前需要煮样吗?25kDa蛋白看分子内二硫键的话,非还原条带的电泳条件是多少?
在非还原性SDS-PAGE(Non-reducing SDS-PAGE)实验中,是否需要煮样取决于你的实验目的和蛋白的特性。
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• 在蛋白质三级结构预测中,核酸序列翻译过来的蛋白质序列里有X,请问这种情况怎么解决呢?网页模型预测可以直接把X删掉吗?
在蛋白质三级结构预测中,蛋白质序列中的 "X" 代表未知或未确定的氨基酸,直接删除 "X" 可能会影响结构预测的准确性。
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在蛋白质研究中,肽段的拼接(peptide assembly)是将质谱、酶解或其他实验方法得到的多个蛋白质片段(肽段)重新组装为完整蛋白序列的过程。这个过程通常涉及生物信息学工具和算法,以下是具体的操作步骤和方法:
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分析肽段活性通常涉及对肽段的生物活性进行评估或分析,这可以通过多种方法进行,具体取决于你要分析的肽段类型(如酶促反应、受体结合活性等)。以下是一些常见的分析肽段活性的方法:
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