蛋白分析FAQ汇总
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• WB跑TLR4和NF-kB这两个蛋白 条带反亮怎么办,已经降低二抗的浓度了。actin 是正常的?
这种情况可能是由于多种原因造成的: 1. 二抗过量:如果你已经尝试降低二抗的浓度,然而问题仍然存在,你可能需要进一步降低二抗的浓度,或者尝试使用不同的二抗。 2. 一抗过量:如果二抗的浓度已经足够低,那么可能是一抗的浓度过高。尝试降低一抗的浓度,看看是否能改善结果。 3. 孵育时间过长
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如果您在尝试检测病毒的NP蛋白时没有得到预期的信号,可能有以下原因: 1. 抗体选择:Western Blot实验的关键是选择正确的抗体。如果你使用的抗体与目标蛋白的亲和力不强,或者抗体本身的质量问题,可能会导致你无法检测到目标蛋白。建议你检查一下你使用的抗体是否适用于Western Bl
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• wb实验蛋白电泳时,在浓缩胶里溴酚蓝弥散是是怎么回事呀?
溴酚蓝是一种常用的追踪染料,在SDS-PAGE电泳中用于追踪样品的迁移。它的迁移速度一般与小分子量的蛋白相似,因此可以用来观察电泳过程。 弥散现象的原因 1.胶的浓度:如果浓缩胶的浓度设置得不合适,可能会导致溴酚蓝的弥散现象。 2.电泳条件:电压、电流、缓冲液的pH和组成等都可能影响溴
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• western blot,wb出现这种情况为什么?蛋白跑到了marker上?
当在Western blot实验中出现蛋白质跑到marker上的情况时,可能有以下几个原因: 1.过度加载样品:如果在Western blot实验中加载了过多的样品,蛋白质可能会超出gel的分离范围,导致一部分蛋白质跑到marker上。这通常发生在样品中含有过高浓度的蛋白质时,或者在加载样
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• WB俩个条带相近,曝光一条条带后,用一抗二抗去除剂清洗后,曝光另一条目的蛋白,结果为什么有俩条条带?
WB电泳 (Western Blot) 是一种检测特定蛋白质在样本中表达量的实验方法。当你提到两个条带相近,并在曝光一个后尝试清洗以曝光另一个时,仍然观察到两个条带,可能有以下几种原因: 1.不完全去除:使用的一抗二抗去除剂可能未能完全去除首次的抗体,导致再次曝光时仍然检测到残留的信号。
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• 自制多克隆抗体做wb时,抗原条带很单一,但提取的蛋白没有目的条带且有杂带,为什么?
当自制多克隆抗体在Western blot(WB)实验中出现抗原条带很单一,但提取的蛋白没有目的条带且有杂带的情况时,可能存在以下几个原因: 1.抗体特异性问题:抗体可能不够特异性,导致其与非目标蛋白结合,形成杂带。这可能是由于抗体的交叉反应性或非特异性结合引起的。在这种情况下,建议使用更
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• 如果通过植物中的基因找到互作蛋白要进行WB验证,但是无植物抗体只有动物抗体来做可以吗?还是有别的方法?
当我们需要验证植物中的基因编码的蛋白与其他蛋白的相互作用时,常用的方法之一是通过免疫印迹(Western blotting,简称WB)进行实验。在WB实验中,我们通常使用特异性抗体来检测目标蛋白的存在与否。对于动物蛋白,我们可以使用动物抗体进行WB验证。然而,如果我们没有植物特异性抗体,只有
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蛋白质的稳定性在很大程度上取决于具体的蛋白质本身、样品的成分、以及存储条件。但是,对于大多数的蛋白质,在室温下放置一夜都有可能导致降解。 对于重要的蛋白样品,建议在分离和纯化后立即冷冻并在-80°C下保存,或者加入适当的稳定剂或抗蛋白酶剂混合物,并在4°C下短时间储存。如果需要长时间存储,则
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详细描述了从脊髓组织中提取、净化和准备蛋白质的过程,为质谱分析做好准备。
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• 重复做了三次质谱实验,得到的三次数据中出现定量值为0,应该如何分析呢?
当在质谱实验中得到三次数据中出现定量值为0时,可以考虑以下几个方面进行分析: 1.检查实验条件和样品处理: 确保实验条件的稳定性,包括仪器的校准和质控样品的使用。 检查样品的处理过程,确保没有发生样品损失或降解。 2.检查质谱仪器和方法: 确保质谱仪器的性能正常,例如检查离子源、质
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