蛋白分析FAQ汇总
-
• 过表达的带FLag标签的蛋白,可以用目标抗体检测到很强的带,但没法用标签抗体wb检测到标签。原因是什么?
在表达带有FLAG标签的蛋白时,如果可以用目标抗体检测到强烈的条带,但无法用标签抗体通过免疫印迹(Western Blot, WB)检测到标签,可能有几个原因: 1.标签抗体的特异性或活性问题: 可能是Flag标签抗体的特异性或活性不足。可能是抗体本身的问题,或者抗体已经过期或在储存过程中
-
HIF-1α(缺氧诱导因子1α)是一种在缺氧条件下表达的转录因子,它在细胞适应缺氧环境中发挥重要作用。蛋白质纯化是一个复杂的过程,涉及多个步骤,确保获得高纯度和活性的蛋白。以下是一个基本的HIF-1α蛋白纯化步骤概述: 1.细胞裂解: 如果HIF-1&a
-
• 在高效液相实验中测样品时,用50%的甲醇溶解样品跟用100%的甲醇溶解样品时再上液相测量的话,测量结果有啥不一样?
在高效液相色谱(HPLC)实验中,使用不同浓度的溶剂(如50%的甲醇和100%的甲醇)溶解样品,可能会对测量结果产生以下影响: 1、溶解性: 不同浓度的甲醇可能会影响样品的溶解度。如果样品在50%的甲醇中溶解性不好,可能会导致样品部分沉淀,这样在高效液相色谱中就无法完全检测到所有的组分。
-
• sds凝胶电泳上样时样品向上浮是什么原因啊?buffer和电泳液的浓度是配套的吗?
SDS-PAGE(SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳)中样品向上浮的现象通常是由于以下原因造成的: 1、样品准备问题: 如果样品中含有大量的油脂或是有机溶剂,这些物质的密度可能低于水,导致样品在凝胶中上浮。确保样品在加入上样缓冲液后充分混合和加热,以保证蛋白质充分变性并与S
-
• page胶跑完蛋白染考马斯亮蓝,偶尔出现空染是什么情况呢?
PAGE凝胶(聚丙烯酰胺凝胶电泳)在使用考马斯亮蓝染色后出现空染(也就是部分区域未染色或染色较浅)的情况可能由多种因素引起: 1、蛋白质浓度过低: 如果某些泳道中的蛋白质浓度太低,可能导致这些区域染色不明显或看不到条带。 2、染色或脱色不均匀: 如果在染色或脱色过程中,凝胶未能完全浸没在
-
• 磷酸化蛋白质组在过柱富集分析等步骤后,怎么确定蛋白的磷酸化位点的?
质谱技术是确定蛋白磷酸化位点的重要工具,在磷酸化蛋白质过柱富集分析后,接下来的实验流程如下: 1、蛋白质消化 将富集的磷酸化蛋白质用特定的蛋白酶(如胰蛋白酶)消化成较小的肽段。 2、磷酸化肽段富集 使用特定的亲和层析技术(如IMAC或TiO2)来富集磷酸化的肽段。这些富集方法能够特异性地
-
• 为什么用Alix蛋白抗体,实验WB上样细胞裂解液会显示两个条带?哪个为准?
使用Alix蛋白抗体在Western Blot(WB)实验中出现两个条带可能有以下原因: 1、蛋白质同源异构体: Alix蛋白可能存在不同的同源异构体,这些异构体在分子量上略有不同,从而在凝胶上表现为不同的条带。 2、蛋白质降解产物: 如果Alix蛋白在细胞裂解过程中部分降解,这可能导致
-
在Western Blot (WB) 实验中,蛋白质加热变性后出现沉淀是一个常见问题。通常由以下几个因素引起: 1.蛋白质浓度过高: 如果样品中的蛋白质浓度过高,加热时可能会导致蛋白质过度聚集和沉淀。 2.样品缓冲液不适当: 使用的样品缓冲液可能不适合所分析的蛋白质。例如,缓冲液的pH值
-
Wnt3a是一种疏水性强的蛋白质,其正确的转膜和电泳条件对于成功的Western Blot实验至关重要。 1、电泳条件: Wnt3a蛋白的分子量约为39 kDa,因此建议使用10%或12%的聚丙烯酰胺凝胶。 建议在恒压模式下进行电泳,开始电压可设置为80-100伏特,直至样品进入分离凝胶
-
• 用一定浓度的乙醇回流提取样品时,过滤浓缩好是进行冻干再上液相测量好,还是旋转浓缩好直接上液相测量好?
在使用一定浓度的乙醇进行样品提取后,接下来如何处理样品以进行液相色谱(HPLC)测量,通常取决于样品的性质和实验的具体要求。这里有两种常见的方法:冻干和旋转蒸发(旋转浓缩),每种都有其优势和局限性。 一、冻干: 1.优势: 冻干可以非常有效地去除所有溶剂,特别适用于热敏感物质。这种方法不
How to order?