蛋白分析FAQ汇总
-
翻译后修饰(PTM)是指蛋白质生物合成后的共价修饰和一般的酶促修饰。蛋白质由核糖体将mRNA翻译成多肽链合成,然后经过PTM形成成熟的蛋白质产物。相关服务:翻译后修饰蛋白组分析
-
蛋白质磷酸化是最常被研究的翻译后修饰。据估计,三分之一的哺乳动物蛋白质可能被磷酸化,这种修饰通常在调节蛋白质功能中起关键作用。相关服务:翻译后修饰蛋白组分析
-
检测翻译后修饰的方法有 1.用于检测翻译后修饰的蛋白质印迹(Western Blotting)。 2.用翻译后修饰亲和珠进行免疫沉淀。 3.使用质谱检测翻译后修饰。 4.用于检测翻译后修饰的体外检测。相关服务:翻译后修饰蛋白组分析
-
• 离子交换色谱—为什么要选择离子交换色谱(Ion Exchange Chromatography,IEX)?
离子交换色谱(IEX)根据分子表面净电荷的差异来分离分子。IEX可用于纯化蛋白质、肽、核酸和其他带电生物分子,提供高分辨率和高负载能力的基团分离。IEX可以分离电荷性质只有微小差异的分子种,如两种只有一个带不同电荷氨基酸的蛋白质。相关服务:蛋白质纯度和均一性表征
-
先选择强离子交换剂。如果选择性不够好,尝试使用弱离子交换剂。强离子交换剂(Q、SP和S)在较宽的pH值范围内较稳定,而弱离子交换剂的稳定性(DEAE、ANX和CM)随pH变化。阳离子交换剂和阴离子交换剂都可用于蛋白质纯化,对于某种特定蛋白质来说选择其中一种可能更有效。如果蛋白等电点pI>7,
-
缓冲离子应具有与IEX介质上的官能团相同的电荷。对于阴离子交换,选择高于等电点(pI)0.5-1个pH单位的缓冲液,因为随着pI的增加,蛋白质会结合得更紧密。对于阳离子交换,选择低于pI0.5-1个pH单位的缓冲液,因为随着pI的降低,蛋白质会结合得更紧密。 若同时进行阴离子和阳离子交换,则
-
a)样品中的干扰。解决方案:使用标准品检查色谱柱性能。b)主峰之前的肩峰或基线逐渐升高可能是另一个样品成分。解决方案:提高效率或改变系统的选择性以提高分辨率。如有必要,尝试其他柱类型。c)柱过载。解决方案:注入较小体积或稀释液(例如1:10 或1:100)的样品。d)样品溶剂与流动相不相容。
-
• hplc—为什么一个或多个色谱峰的高度在不同的色谱分析之间会发生变化?
a)一个或多个样品组分劣化或柱活性改变。解决方案:使用新鲜样品或标准品来确认样品是问题的根源。如果部分或全部峰值仍小于预期值,则更换色谱柱。b)样品制备过程的变化。矩阵中的差异会影响峰值高度。解决方案:检查样品制备过程,消除基质效应。c)泄漏,尤其是在注射器端口和柱入口之间。解决方案:检查系
-
HILIC是指亲水相互作用液相色谱法,是一种用于分离极性物质的技术,也称为水性正相色谱法。固定相必须具有极性,例如二氧化硅、二醇、胺、酰胺或两性离子。流动相通常使用乙腈/水混合物,其中水是强组分,因此表现出比乙腈更高的洗脱强度。因此,HILIC是正相色谱的一个子类别,显示出与反相相反的洗脱模
-
氨基酸分析(AAA)是通过用恒沸盐酸(6N HCl)对肽进行液相水解,然后对游离氨基酸进行柱前衍生化。衍生化的氨基酸通过反向高效液相色谱分离。单个峰的整合允许测定肽水解物的氨基酸组成。然而,Trp的吲哚部分在水解过程中被破坏;Asn和Gln的侧链酰胺基团以及Pyr的内酰胺循环将分别水解产生A
How to order?

