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化学交联质谱法（Cross-linking Mass Spectrometry, CLMS）是生物化学和结构生物学领域中一种强有力的研究方法。它将化学交联技术与质谱分析结合起来，用于研究蛋白质之间的相互作用以及蛋白质复合物的三维结构。化学交联质谱法的基本原理是利用化学交联剂在相邻的氨基酸残基
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化学交联质谱分析是一种在结构生物学研究中迅速发展的技术，广泛用于解析蛋白质-蛋白质相互作用（PPI）和蛋白质结构。其基本原理是使用化学交联剂将相互作用的蛋白质或蛋白质复合物中的特定氨基酸残基共价连接，然后通过质谱分析识别连接的位点，进而推测蛋白质的空间构象和相互作用方式。化学交联质谱分析的应
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edman降解流程主要用于确定多肽和蛋白质的氨基酸序列。该技术由Pehr Edman于1950年代首次开发，是蛋白质化学领域的一项突破性进展。edman降解流程利用化学试剂对蛋白质的N-末端氨基酸进行逐步切割和识别，使研究人员能够逐步解析出多肽链中的氨基酸序列。edman降解流程在很长一段时
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4D蛋白质组学分析是在传统 3D 蛋白质组学（保留时间、质荷比、离子强度三个维度）的基础上增加了离子淌度这一维度的蛋白质组学分析技术。该技术不仅停留在三维结构的研究上，更将时间维度引入其中，从而提供了更加全面和动态的生物学信息。4D蛋白质组学分析主要通过整合质谱技术、时间分辨技术和数据分析方
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肽段质量映射是蛋白质组学研究中一种重要的分析技术。它的核心原理是利用质谱技术测量肽段的质量，从而推断其氨基酸序列和来源蛋白质。其作用在于通过精确测定肽段的质量，结合生物信息学分析，可以对复杂的蛋白质混合物进行定性和定量分析。这对于理解生物系统中的蛋白质功能、结构以及相互作用具有重要意义。肽段
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SILAC质谱分析即细胞培养中氨基酸的稳定同位素标记质谱分析技术，广泛应用于探究细胞内蛋白质动态变化及其功能。SILAC（Stable Isotope Labeling with Amino acids in Cell Culture）即细胞培养中氨基酸的稳定同位素标记技术。SILAC质谱分
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单细胞磷酸蛋白质组学结合了单细胞分析和磷酸化蛋白质组学技术，能够在单个细胞水平上对蛋白质的磷酸化修饰进行高通量分析，为揭示细胞内信号传导和生命活动调控提供了新的视角。蛋白质磷酸化是一种常见且重要的翻译后修饰方式，参与调控细胞的多种生命活动，如信号转导、代谢调控、细胞周期、细胞凋亡等。在细胞群
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双向电泳蛋白质组学（2-D Electrophoresis Proteomics）是通过结合等电聚焦（IEF）和SDS-PAGE双重电泳技术研究细胞、组织或生物体中全部蛋白质的表达、结构、功能、相互作用以及动态变化的分析方法。其核心是分离样品中的蛋白质分子，根据其等电点和分子量实现高分辨率的
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2D-DIGE分析（二维差异凝胶电泳分析）结合了传统的二维电泳和荧光标记技术，能够在单个凝胶中分辨并定量多种蛋白质样本。2D - DIGE（Two - Dimensional Difference Gel Electrophoresis）的核心优势在于其高分辨率和高灵敏度，用于比较蛋白质表达
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蛋白质纯化与表征技术是生物化学和分子生物学研究中的关键步骤。这一技术旨在分离、提纯并确定蛋白质的结构和功能特性，以便于更深入地理解其生物学作用和潜在应用。蛋白质是生命活动的基本构件，它们在生物体内执行各种功能，包括催化化学反应、传递信号、运输分子和构建细胞结构等。因此，蛋白质纯化与表征技术对
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