基于LC-MS/MS的免疫肽组学分析工作流程详解
- 肿瘤相关抗原(TAA)
- 肿瘤特异性新抗原(Neoantigen)
- 病原体源性抗原(如病毒、细菌)
- 自身抗原(与自身免疫疾病相关)
随着免疫治疗成为肿瘤、病毒感染和自身免疫疾病干预的研究热点,人类对抗原呈递机制的认知也不断深入。在此背景下,免疫肽组学(Immunopeptidomics)应运而生,成为连接分子组学与免疫学之间的关键桥梁。该技术致力于全面识别由主要组织相容性复合体(MHC)分子呈递至细胞表面的肽段集合,这些肽段可以直接被T细胞识别并触发免疫反应。因此,免疫肽组学不仅在新型疫苗的开发中具有广阔前景,也为个体化癌症免疫疗法提供了可靠的抗原筛选依据。基于LC-MS/MS(液相色谱-串联质谱)的免疫肽组学分析技术,能够在实际生物样本中直接检测MHC分子所呈递的肽段,因此被视为当前研究抗原呈递机制最直接、最可信的技术路径。本文将系统梳理基于LC-MS/MS的免疫肽组学分析流程,从样本制备到质谱检测,再到数据解析,帮助科研人员深入理解这一前沿技术的实施要点与应用价值。
一、免疫肽组学的基本原理与研究对象
免疫肽组学的研究对象为由MHC-I或MHC-II分子呈递的内源性肽段。这些肽段来源于细胞内蛋白质的降解产物,反映了细胞的分子状态,包括癌变、感染或应激等。MHC-I主要呈递来自胞内的8–11个氨基酸的短肽,用于激活CD8+ T细胞,而MHC-II则负责呈递更长的肽段(13–25个氨基酸),激活CD4+ T细胞。
研究重点通常包括:
这些肽段是开发个体化疫苗、TCR-T疗法以及靶向治疗策略的核心依据。
二、基于LC-MS/MS的免疫肽组学完整实验流程
免疫肽组学实验面临的最大挑战是目标肽段的低丰度、高复杂性。因此,需要在实验设计上高度优化,以提高检测灵敏度和数据质量。
1、样本准备
常用的样本包括癌细胞系、患者肿瘤组织、PBMC、HLA转染细胞等。由于MHC呈递的肽段数量稀少,通常需要上亿级细胞量或等效组织量,以获得可检测水平的免疫肽。
2、MHC分子的免疫共沉淀(Immunoprecipitation, IP)
使用特异性抗体(如W6/32用于HLA-I)偶联磁珠或琼脂糖凝胶,进行免疫共沉淀以富集MHC-肽复合物。该步骤的关键在于样本裂解的完整性与抗体的结合效率,直接影响下游肽段的纯度与回收率。
3、弱酸洗脱肽段
使用0.1% TFA等弱酸条件洗脱MHC结合的肽段。洗脱液中含有大量背景物质,因此需要快速、低温操作,防止蛋白降解,并最大限度保留目标肽段。
4、肽段净化与浓缩
洗脱液经C18固相萃取柱纯化,以去除盐分、表面活性剂等干扰物。必要时可进一步进行高pH反相分级,提高低丰度肽段的检测概率。
5、LC-MS/MS分析
采用高分辨率质谱平台(如Orbitrap Exploris、Fusion Lumos等),在无酶切设置下进行全扫描分析。数据采集模式通常为DDA(Data-Dependent Acquisition),也可采用DIA(Data-Independent Acquisition)提高覆盖率。
推荐参数设置包括:
(1)动态排除以避免冗余扫描;
(2)更长的色谱梯度以提升分离度;
(3)更高的AGC与分辨率以增强灵敏度。
6、数据分析与抗原筛选
数据分析需使用支持无酶切搜索的算法(如MaxQuant、PEAKS、Byonic),并设置合适的假发现率(FDR ≤ 1%)。随后将肽段与目标细胞或组织的HLA型信息比对,确认其MHC限制性。结合体细胞突变数据与转录组数据,可筛选出具有免疫原性的新抗原候选。
三、免疫肽组学的应用前景
免疫肽组学作为一种连接细胞蛋白质降解产物与T细胞识别机制的技术,正在多个研究和应用领域展现巨大潜力:
1、个体化肿瘤疫苗设计:通过识别病人特异的新抗原,提高T细胞激活效率;
2、TCR-T或CAR-T靶点发现:确认表达特异性强、免疫原性高的抗原呈递肽;
3、病毒或病原体疫苗开发:例如新冠病毒变异株特异抗原筛选;
4、自身免疫疾病机制研究:识别潜在诱导自身反应的自身抗原肽段。
随着质谱技术、算法能力和多组学整合手段的不断提升,免疫肽组学将在精准免疫治疗领域扮演越来越关键的角色。
免疫肽组学以其高度的生理相关性与技术前瞻性,正在重塑我们对抗原识别与免疫响应的理解。基于LC-MS/MS的肽段直接鉴定方式,已成为新抗原发现和个体化免疫疗法开发的重要支撑平台。未来,随着样本处理效率与算法精度的不断优化,免疫肽组学有望为精准医学带来更多突破。如需定制免疫肽组学研究策略,欢迎联系百泰派克生物科技获取技术咨询与方案支持。
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