蛋白分析FAQ汇总
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• 差异凝胶电泳2D-DIGE进行定量蛋白质组学分析,可以检测多少个蛋白点?
差异凝胶电泳2D DIGE 进行定量蛋白质组学分析时,如果使用 pH3-10 IPG 胶条检测 2000-5000 个蛋白质斑点。如果使用额外的 IPG 胶条,例如 pH 4-7、pH 6-9 和 pH 7-11,可以检测到超过 5000 个点。 相关服务: 二维凝胶电泳服务
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• 差异凝胶电泳2D-DIGE进行定量蛋白质组学分析,数据报告中包括哪些信息?
差异凝胶电泳2D DIGE, 进行定量蛋白质组学分析后的数据报告一般包含两个主要部分: ImageQuant 分析:单个样品的凝胶图像和两个样品图像的叠加; DeCyder分析:对不同样品之间的所有斑点进行定量分析和比较。 相关服务: 二维凝胶电泳服务
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• 为什么要使用2D Wb来进行宿主残留蛋白 HCP抗体覆盖率检测而不是 ELISA、LCMSMS 或 AAE?
通过2D Western blot 进行宿主残留蛋白 HCP(Host Cell Protein)检测,一般采用荧光标记进行,可以从同一凝胶和同一膜上生成 HCP 和 WB 图像。数据报告提供 HCP、Western 印迹和 HCP/Western 叠加图像,可以直接显示 ELISA 或 L
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• 通过2D Wb进行宿主残留蛋白 HCP检测,1 次 HCP 分析测试可以分析多少个 HCP 样品?
1 次 HCP 分析测试可进行 3 个样品检测。检测报告中可提供不同 HCP 样本的单个 HCP 图像和叠加图像,为您提供了其他平台无法实现的 HCP 组成、修改和碎片的直接可视化和比较。此外,定量分析提供点计数、相似性分析、总 HCP 和 DS 数量。 相关服务: 蛋白质免疫印迹和电转
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• 通过2D Wb进行宿主残留蛋白 HCP检测,HCP斑点可以从大量原料药(DS)中分离出来吗?
答案是肯定的。根据原料药的分子量和等电点,我们可以修改 IEF 和 2D 条件以实现 HCP 与 DS 的最佳分离。 相关服务: 蛋白质免疫印迹和电转移服务
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• SWATH定量—为什么不通过在 MS 和 MS/MS 级别对样品中的每个离子进行测序来生成数据库
理论上应该这样做。 理想情况下,机器的速度足以在 0.7 Da 的小窗口中扫描整个 m/z 范围,这对应于 MRM 窗口,并且是我们可以用四极杆隔离的最小窗口。扫描蛋白质通常的m/z范围(从350到1250 m/z)代表了大约1285个独立的0.7 Da窗口,在这个窗口中我们必须分离和破碎前
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• SWATH定量—是否可以通过将结果映射到理论数据库上将离子与蛋白质联系起来?该映射是由MS/MS鉴定软件完成的吗?
可以,一旦IDA运行完成,每个离子的MS和MS/MS信息都被映射到一个理论数据库中,以确定样品中存在的肽和蛋白质。这个过程可以通过几种算法完成,包括Mascot、OMSSA、ProteinPilot或多算法界面,如搜索GUI。 相关服务: SWATH定量蛋白组学服务
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SILAC即细胞培养条件下稳定同位素标记技术(Stable Isotope Labeling By Amino Acids In Cell Culture),它可用于对培养细胞产生的多个样品进行相对定量。在典型的SILAC实验中,两个细胞群在轻培养基或重培养基中生长,后者含有 15N/13C
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许多转化的细胞系都适合SILAC分析。 相关服务: SILAC技术
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可以先加样本和抗体进行反应,然后加磁珠;或者先加抗体和磁珠,然后再加入样本。不推荐同时加入样品、磁珠和抗体,同时加入三个组分可能会使最终的结果变差。相关服务:CO-IP免疫共沉淀法蛋白互作分析
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