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酵母双杂交分析是用于研究蛋白质-蛋白质相互作用的分子生物学技术。该方法最初由Fields和Song在1989年开发，旨在利用酵母细胞中转录激活的机制来检测两种蛋白质是否能够相互结合。酵母双杂交分析的基本原理是将两种感兴趣的蛋白质分别与转录因子的激活域和DNA结合域融合，然后在酵母细胞中表达。
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N端测序（N-terminal sequencing）是解析蛋白质一级结构的常用手段，广泛应用于蛋白质组学、生物医药及结构生物学研究。高效、精准的测序不仅能揭示蛋白质的翻译起始、加工修饰及降解模式，还能提高生物制药质量控制的准确性。为了最大化测序效率，需要在实验设计、样本处理、测序方法选择和
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C端测序（C-terminal sequencing）是一种专门用于分析蛋白质C端序列的技术。在蛋白质组学研究中，氨基酸序列的解析对蛋白功能的研究至关重要。然而，与经典的N端测序相比，C端序列分析的技术发展较晚且难度更大，主要受到酶解策略、化学修饰及测序方法的限制。近年来，随着蛋白质组学技术
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C端测序（C-terminal sequencing）是一种专门用于解析蛋白质C端序列的技术，在蛋白质组学研究中具有重要价值。与传统的N端测序相比，该技术因其技术难度较大，发展相对较晚。但近年来，质谱（Mass Spectrometry, MS）技术的快速发展，使得基于MS的C端测序在蛋白质
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蛋白质是生命活动的核心执行者，其结构与功能息息相关。科学家们长期关注蛋白质的N端测序，而对蛋白质的C端（羧基端）研究相对滞后。实际上，C端在调控蛋白质稳定性、亚细胞定位、信号传导乃至降解中都发挥着重要作用。尤其在蛋白质翻译后修饰、非典型剪切事件及疾病标志物挖掘方面，C端信息正展现出独特价值。
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N端测序（N-terminal sequencing）是分析蛋白质氨基酸序列时经常使用的技术，主要用于蛋白质组学、分子生物学及生物制药等领域。该技术通过测定蛋白质或多肽的N端氨基酸序列，揭示蛋白质的结构特征、修饰情况以及翻译后加工信息。目前，其主要方法包括传统的艾德曼降解法（Edman De
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艾德曼降解法（Edman Degradation）是经典的 N 端测序技术，通过逐步降解蛋白质或多肽的 N 端氨基酸并鉴定其序列。尽管该方法具有高特异性，但受样本质量、反应效率及背景干扰的影响，实验优化对于提高测序准确性至关重要。本文将围绕样本制备、反应条件、检测分析及误差控制进行优化策略探
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串联质谱蛋白质组学是一种利用串联质谱技术对生物体内蛋白质进行全面分析的方法。这一技术的核心在于对复杂的蛋白质混合物进行分离、鉴定和定量分析，从而深入理解蛋白质的结构、功能及其在生物学过程中的作用。串联质谱蛋白质组学的应用范围极为广泛，包括但不限于疾病生物标志物的发现、药物靶标的鉴定、细胞信号
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组织蛋白质组学分析是研究生物体不同组织中蛋白质的种类、结构、修饰及其生物学功能的学科。相较于单细胞蛋白质组学或体液蛋白质组学，该技术以完整组织为研究对象，能够在保持细胞微环境和空间信息的前提下，揭示蛋白质的表达变化及相互作用。由于组织是由多种细胞构成的复杂系统，蛋白质在其中的动态变化受到遗传
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基于TMT的定量蛋白质组学（Tandem Mass Tag, TMT）是一种利用同位素标签实现多重蛋白质定量分析的技术。基于TMT的定量蛋白质组学的最大优势在于其高通量特性，可同时分析多个样本，提高实验效率并减少批次效应。此外，由于TMT标记发生在肽段水平，相比于LFQ方法能够减少技术偏差，
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