iTRAQ定量蛋白组学技术
- 报告基团:指示蛋白样品丰度水平。4-plex标签的报告基团质量分别为114 Da、115 Da、116 Da和117 Da。
- 平衡基团:平衡报告基团的质量差,使等重标签重量一致,保证标记的同一肽段m/z相同。4-plex标签的平衡基团质量分别为31 Da、30 Da、29 Da和28 Da,这使4个iTRAQ标签的等重标签的总质量均等于145 Da。
- 肽反应基团:能与赖氨酸侧链或肽段的N端发生置换反应,完成对肽段的标记。
同位素标记相对和绝对定量(Isobaric Tag for Relative and Absolute Quantitation,iTRAQ)技术是由美国AB Sciex公司研发的一种多肽体外标记技术。该技术采用4种或8种同位素的标签,通过特异性标记多肽的氨基基团,而后进行串联质谱分析,可同时比较4种或8种不同样品中蛋白质的相对含量或绝对含量。
iTRAQ试剂由报告基团、平衡基团和肽反应基团三部分组成,形成4种或8种相对分子质量均等量(145或305)的异位标签。

图1 iTRAQ标签结构(4标)
iTRAQ技术定量分析蛋白质组学的一般流程:
1、蛋白质酶解:将蛋白样品酶解消化成多肽片段。
2、iTRAQ标记:使用等量不同的iTRAQ标签标记不同多肽样品。
3、样品混合:将不同组的标记肽段等量混合在一起,然后进行真空冷冻干燥,以去除多余的溶剂和试剂。
4、LC-MS/MS质谱检测及分析:使用质谱仪对混合后的标记肽段进行串联质谱分析。在质谱仪中,肽段会被碎裂成更小的片段,并产生不同质量的离子。这些离子的强度差异代表了不同肽段的相对丰度。
5、数据分析:通过软件对质谱原始数据进行处理和分析。不同样品来源的同一肽段在iTRAQ标记后,分子量完全相同,因此在一级质谱图中呈现为一个峰。在二级碎裂后,报告基团、平衡基团和多肽反应基团之间的键断裂,产生具有特定质量的报告离子。通过比较这些报告离子的峰高和面积,可以定量分析不同样品间相同肽段的表达量。

图2 iTRAQ定量蛋白质组学技术流程
iTRAQ除标记样本数量与TMT有差别外,其他方面(原理和应用)都大致相同。两者均具备高通量和高准确性的特点,被广泛应用于定量分析和大规模的蛋白质组比较研究。百泰派克生物科技BTP采用Thermo Fisher的Q ExactiveHF质谱平台,Orbitrap Fusion质谱平台,Orbitrap Fusion Lumos质谱平台结合Nano-LC,提供基于体外的iTRAQ/TMT定量蛋白质组学分析服务,此外还有体内标记的SILAC技术,适用于不同的样本和场景,可满足您不同的需求,欢迎咨询。
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