结合多组学(Multi-Omics)时,Shotgun蛋白组数据如何处理?
- 相对定量:如LFQ(Label-Free Quantification)或iBAQ(Intensity Based Absolute Quantification);
- 高缺失率:部分蛋白在某些样本中未被检测到;
- 数据偏态明显:通常呈对数正态分布;
- 不同层级的数据结构:肽段 → 蛋白 → 通路;
- 跨组学难以直接对齐:如蛋白名与转录本ID、代谢物名不一致。
- 将UniProt ID / Accession Number映射到基因Symbol或Ensembl ID
- 利用bioMart、UniProt API、gProfiler等工具进行批量注释转换
- 合并多肽识别结果为唯一蛋白代表(Protein Inference)
- 标准化命名,解决不同平台或数据库间命名不一致的问题
- 方差筛选:保留在样本间变异较大的蛋白
- PCA / t-SNE / UMAP:探索样本间关系和分组特征
- WGCNA:构建加权共表达网络,提取模块特征
- 差异分析结果:保留显著差异蛋白(DEPs)用于后续建模或富集分析
在多组学整合分析(Multi-Omics Integration)中,Shotgun蛋白组学(Shotgun Proteomics)数据的处理策略至关重要。由于蛋白组数据天然具有半定量性、缺失值较多、跨样本和平台差异大的特点,处理不当会严重影响与基因组、转录组、代谢组等其他组学数据的融合效果。
一、Shotgun蛋白组学:数据特征与挑战
Shotgun蛋白组学,又称数据依赖型采集(DDA)蛋白组学,是一种通过质谱对复杂蛋白混合物进行全面检测的策略,输出通常为蛋白相对丰度表(Protein Abundance Matrix)。常见特点包括:
因此,如何科学处理这些数据,是后续高质量组学整合分析的前提。
二、蛋白组数据预处理
1、数据过滤
(1)去除低识别置信度蛋白(如PEP > 0.01)
(2)去除污染物(contaminants)、反向序列(reverse hits)
(3)删除鉴定数量极少的蛋白(如在超过50%样本中缺失)
2、对数转换(Log2 Transformation)
有助于将偏态的强度数据转换为近似正态分布,提高后续统计分析的鲁棒性。
3、批次效应校正(Batch Effect Correction)
在多批次或跨平台数据合并时,常使用ComBat(来自sva包)进行批次效应调整,以提高数据一致性。
三、缺失值处理:是挑战更是信号
缺失值是Shotgun蛋白组数据的常见特征,处理方式会显著影响后续分析结果。需区分:
1、随机缺失(MAR)
可能由于仪器检测灵敏度或偶然性产生。适合使用KNN填补、Bayesian PCA等方法。
2、非随机缺失(MNAR)
多为低丰度蛋白未被检测,代表生物学意义。推荐使用左截断填补法(Left-Censored Imputation),如MinProb、QRILC等策略。
四、蛋白注释与基因映射:实现跨组学对齐
多组学整合的关键之一是实现数据的“共语言”,即将Shotgun蛋白组数据与转录组、基因组、代谢组等其他层级进行映射对齐(Mapping)。常见做法包括:
五、降维与特征选择:为整合铺路
在进入整合分析前,对Shotgun蛋白组数据进行降维(Dimensionality Reduction)与特征选择(Feature Selection)是必不可少的步骤:
这些方法不仅优化数据质量,也为后续与其他组学的融合创造良好基础。
六、与其他组学数据的整合策略
根据研究目的和数据类型不同,常用整合策略包括:
1、垂直整合(Vertical Integration)
即跨层级整合(如mRNA + 蛋白 + 代谢物),强调同一通路/功能在不同组学层的协调性。
常用方法:Multi-Omics Factor Analysis(MOFA)、DIABLO(来自mixOmics)、iClusterPlus、JIVE等。
2、水平整合(Horizontal Integration)
在同一层级(如多批Shotgun蛋白组)合并,强调样本间模式一致性。
常用方法:ComBat批次校正、Harmony、Canonical Correlation Analysis(CCA)等。
3、路径富集或网络驱动整合
以KEGG、Reactome、STRING为背景,寻找在多组学中同时富集的通路/模块。
多组学研究正逐步从数据叠加走向信息融合。而Shotgun蛋白组数据的科学处理,不仅影响整合质量,更关乎结果的可解释性与转化潜力。在百泰派克生物科技,我们凭借全流程质谱平台、标准化数据处理体系、智能整合算法管线,帮助科研客户从复杂的组学数据中提取真正有价值的信息,加速生物医学研究向前推进。
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