大豆分离蛋白和乳清蛋白在溶解过程中无法完全溶解,在此情况下应如何进行上机检测?
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聚集
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疏水相互作用增强
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二硫键交联
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热处理后变性沉淀
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pH 接近等电点时溶解性下降
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进样针或管路堵塞
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色谱柱污染
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喷雾不稳定
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数据重复性变差
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涡旋混匀
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超声辅助溶解
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室温或适当温度孵育
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离心取上清
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SDS 上样缓冲液
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还原剂,如 DTT 或 β-巯基乙醇
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加热变性
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必要时短时超声
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8 M urea
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或 guanidine hydrochloride
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配合还原剂
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必要时超声辅助
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定量
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还原/烷基化
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酶解
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对沉淀单独再提取
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改用更强裂解体系,如 SDS 辅助提取
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然后通过 S-Trap、SP3、FASP 等方式去除不适合 MS 的组分,再酶解上机
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先离心
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只取澄清上清
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必要时再做过滤
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调整 pH 远离等电点
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使用尿素类变性体系
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配合还原剂和超声
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离心分离上清与沉淀
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必要时对沉淀做二次提取
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先温和溶解
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再离心分层
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对不溶部分单独处理
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直接将浑浊悬液上 LC-MS
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不经离心就上 HPLC 或质谱
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为了强行溶解加入大量 SDS 后直接进仪器
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只看总体浓度,不区分上清和沉淀中的蛋白分布
如果大豆分离蛋白(SPI)和乳清蛋白在溶解过程中不能完全溶解,不要直接把浑浊、带颗粒的样品上机。是否能检测,关键不在于“必须完全澄清”这一个条件,而在于你做的是哪一种检测,以及你是否把可上机部分和不溶部分分开处理。
先说结论:
可以检测,但应先做“分级处理”,而不是把未完全溶解的悬液直接上机。
一、为什么会出现无法完全溶解
这两类蛋白都容易出现:
所以“不完全溶解”本身并不少见,尤其是食品级样品、喷粉样品、热处理样品或高浓度样品。
二、上机前最重要的原则
1、不要直接上浑浊样品
否则容易导致:
2、先离心,把“可溶部分”和“不溶部分”分开
推荐先做:
这样至少可以先检测可溶蛋白部分。
3、沉淀部分不要直接丢掉
如果你的目标是尽可能全面分析蛋白组成,沉淀部分往往仍含有大量目标蛋白,需要换更强的溶解体系重新提取。
三、不同检测目的,处理方式不同
1、如果你做的是 SDS-PAGE / Western blot
这类检测对溶解体系容忍度较高,可以使用更强的变性条件。
可采用:
常见思路是把样品直接用含 SDS 和还原剂的 buffer 充分变性,再离心取上清上样。
这种情况下,即使原始样品不完全溶于水,也通常仍可获得较好的上样效果。
适合你的判断是:如果目的是看条带、分子量分布或做 WB,优先用强变性条件把能溶出来的部分尽量溶出来。
2、如果你做的是 bottom-up 蛋白质组学 / LC-MS/MS
这时要更谨慎,因为很多强去污剂虽然能溶蛋白,但不适合直接进质谱。
推荐思路:
第一步:先用适合酶解前处理的变性体系溶解
可考虑:
第二步:离心,取上清
上清用于后续:
第三步:如果沉淀仍明显存在
说明有一部分蛋白仍难溶,这时可以:
这个策略比“直接放弃沉淀”更全面。
关键点
对于 LC-MS/MS,SDS 可以用于提取,但不能未经清理直接上机。
所以如果你为了提高溶解度加入了 SDS,后面一定要配套 cleanup。
3、如果你做的是完整蛋白质检测、液相或其他直接进样分析
这类检测通常更怕颗粒和不溶物。
建议:
但要注意,蛋白样品过滤可能带来吸附损失,所以如果浓度不高,不一定首选滤膜;很多情况下高速离心取上清比直接过滤更合适。
四、针对大豆分离蛋白和乳清蛋白,更实用的处理建议
大豆分离蛋白
SPI 更容易因聚集、疏水作用和加工变性而不完全溶解。
如果是做蛋白组成或质谱分析,通常可以先尝试:
乳清蛋白
乳清蛋白整体溶解性通常优于 SPI,但如果样品经历了热处理、糖基化反应、氧化或高浓度配制,也会形成聚集体。
这时同样建议:
五、最稳妥的上机策略
如果你现在只是想知道“这种样品还能不能送检/上机”,一个比较稳妥的方案是:
方案 A:检测可溶部分
1、选择合适缓冲液溶解
2、超声或振荡辅助
3、离心
4、取上清进行检测
方案 B:提高覆盖率
1、对上清单独检测
2、对沉淀再做强变性提取
3、cleanup 后再检测
4、最后合并解析结果
这样既能保证仪器安全,也能减少因为“不完全溶解”导致的蛋白漏检。
六、不建议的做法
七、结论
在大豆分离蛋白和乳清蛋白无法完全溶解的情况下,通常应先离心分离,上清作为可上机部分进行检测;沉淀部分则根据检测目的选择进一步强变性提取。
如果是 SDS-PAGE/WB,可用 SDS + 还原剂 + 加热处理;如果是 LC-MS/MS,优先采用尿素/胍盐等可兼容酶解的体系,必要时配合 S-Trap、SP3 或 FASP 清理后再上机。
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