乙酰化定量蛋白组研究中,请问是不同酶切肽段后混合打质谱吗?
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不能在酶切前混合样本,否则无法实现分组定量;
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也不建议在富集前混合未标记的样本,会丢失定量信息。
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为提高覆盖率,可在富集后混合上机;
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若需比较不同酶切效率或乙酰化位点差异,则需分别上机。
在乙酰化定量蛋白组学研究中,是否在酶切后混合样品进行质谱分析,取决于所采用的定量策略,以下是不同策略下的处理方式说明:
一、标记法定量(如 TMT、iTRAQ)
这种情况下,建议在酶切并进行乙酰化肽段富集后,再混合样品:
标准流程如下:
1、各组样本分别蛋白抽提 → 还原烷基化 → 酶切(一般为Trypsin ± Lys-C)
2、各自进行TMT/iTRAQ等同位素标记反应
3、标记完成后将各组样本混合
4、混合样品再进行乙酰化肽段富集(如使用抗乙酰化抗体)
5、富集产物上机LC-MS/MS分析
注意:
二、标记前富集(Label-Free)
若采用Label-Free定量方法(非标记),则各组样本全流程均需独立操作,包括:独立酶切 → 独立富集乙酰化肽段 → 分别上机 → 后续数据比对实现定量
三、多酶切策略(如 Trypsin+Glu-C)是否需混合?
如果问题涉及不同酶切方式对比或提高覆盖率:
1、可采用 并行酶切(Trypsin 与 Glu-C 分别酶切),然后各自富集,再分别上机或混合后上机。
2、是否混合,取决于实验设计目的:
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