FFPE组织如何进行去蜡处理用于LC-MS蛋白质组学?
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阻碍蛋白提取:石蜡形成疏水屏障,影响裂解液渗透
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抑制酶解反应:残留石蜡会影响胰蛋白酶活性
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污染质谱系统:石蜡成分可能导致LC-MS系统污染和信号抑制
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石蜡属于非极性物质
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需使用非极性有机溶剂(如二甲苯)进行溶解
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随后通过梯度乙醇逐步去除溶剂并复水
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加入1 mL二甲苯
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室温振荡10分钟
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离心(14,000 g, 5 min)
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去除上清
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重复2次
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100%乙醇(2次)
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95%乙醇
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70%乙醇
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每步离心并弃上清
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加入去离子水或缓冲液
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准备进入蛋白裂解步骤
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去蜡效率高
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适用于绝大多数FFPE样本
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技术成熟、重复性好
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二甲苯具有毒性
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多步操作可能导致样本损失
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对低丰度蛋白有一定影响
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简化流程(一步完成去蜡+裂解)
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减少样本损失
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对部分蛋白可能造成降解
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对缓冲体系要求较高
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毒性更低
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对蛋白结构影响较小
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直接乳化石蜡
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与SP3、FASP等蛋白质组流程兼容
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高温(95°C以上)
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强变性剂(如SDS、urea)
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长时间孵育(1-2小时)
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裂解缓冲液组成
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超声或高压辅助裂解
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蛋白回收方法(SP3、S-Trap等)
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切片过厚会影响溶剂渗透
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推荐5-10 μm
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时间不足会残留石蜡
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时间过长可能导致蛋白损失
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不充分离心会影响分层
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建议≥14,000g
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低纯度溶剂可能引入污染
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肽段覆盖度
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蛋白鉴定数量
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重复性评估
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肿瘤标志物发现
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回顾性临床研究
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精准医学研究
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空间蛋白质组学
在临床研究和转化医学领域,福尔马林固定石蜡包埋(FFPE, Formalin-Fixed Paraffin-Embedded)组织样本因其长期稳定保存和丰富的临床信息,成为极具价值的生物资源。然而,FFPE样本在用于LC-MS蛋白质组学分析前,必须解决一个关键技术难题,即实现高效且具有良好重复性的去蜡处理(deparaffinization)。
一、为什么FFPE样本必须去蜡?
FFPE样本制备过程中,组织会经过福尔马林固定和石蜡包埋。石蜡的存在虽然有助于结构保存,但对蛋白质组学分析却带来多重干扰:
因此,彻底去除石蜡是FFPE蛋白质组学样本前处理的第一步,也是决定数据质量的关键因素之一。
二、FFPE去蜡的基本原理
去蜡的核心原理基于“溶剂相似相溶”:
这一过程不仅是物理去除石蜡,同时也是为后续蛋白提取创造合适的水相环境。
三、经典去蜡方法:二甲苯法
1、标准流程
目前最常用的方法是二甲苯(xylene)去蜡法,其典型步骤如下:
(1)二甲苯脱蜡
(2)梯度乙醇洗涤
(3)水化处理
2、方法优势
3、方法局限
四、替代去蜡方法:无二甲苯策略
随着蛋白质组学技术的发展,研究人员逐渐探索更温和、高效的去蜡方案。
1、热裂解去蜡法(Heat-induced deparaffinization)
利用高温(通常95°C以上)配合裂解缓冲液实现石蜡溶解:
(1)优点
(2)缺点
2、有机溶剂替代(如Heptane)
部分实验使用正庚烷(heptane)或其他低毒溶剂替代二甲苯:
但目前应用尚不如二甲苯广泛。
3、表面活性剂辅助法
使用SDS、SDC等表面活性剂:
五、去蜡后关键步骤:蛋白提取与交联逆转
去蜡只是第一步,FFPE样本还面临另一个核心问题,即甲醛交联(formalin crosslinking)。
1、交联逆转策略
通常采用:
2、蛋白提取优化
关键因素包括:
六、影响去蜡效果的关键因素
在实际实验中,去蜡效果直接影响蛋白质组数据质量,需重点关注以下因素:
1、样本厚度
2、去蜡时间
3、离心效率
4、溶剂纯度
七、LC-MS蛋白质组学中的最佳实践建议
为了获得高质量FFPE蛋白质组数据,建议遵循以下优化策略:
1、标准化流程
确保每批样本使用一致的去蜡和处理条件。
2、结合自动化平台
减少人为误差,提高重复性。
3、使用高灵敏度质谱系统
提升低丰度蛋白检测能力。
4、数据质量控制
包括:
八、FFPE蛋白质组学的应用前景
随着去蜡及前处理技术的不断优化,FFPE样本正在成为蛋白质组学的重要来源:
其与LC-MS的结合,为临床样本深度挖掘提供了前所未有的机会。
FFPE组织的去蜡处理看似基础,却是决定LC-MS蛋白质组学成败的关键环节。从传统二甲苯法到新兴的无溶剂策略,技术的不断演进正在显著提升数据深度和可靠性。对于希望开展高质量FFPE蛋白质组研究的科研人员而言,选择合适的去蜡方法并优化整体流程至关重要。百泰派克生物科技依托先进Orbitrap质谱平台与优化的FFPE前处理流程,实现高深度蛋白鉴定、优异数据重复性及卓越临床样本适配能力,为肿瘤研究与转化医学提供一站式蛋白质组学解决方案。
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