IP 与 Co-IP 有何区别?实验目的、流程差异与质谱衔接
- 需要先确认诱饵蛋白是否可被抗体高效沉淀。
- 想评估蛋白表达诱导、抑制剂处理等变量对诱饵量而非互作全貌的影响。
- 后续将诱饵用于非互作目的的进一步纯化分级。
- 手头有针对 A 的高质量抗体并希望检测 B 是否随 A 特异地共富集。
- 想回答在体内或接近体内的条件下,这一对蛋白可否共存在于同一可溶性复合物池中——仍需对照与orthogonal验证。
- 想一次性把共沉淀蛋白送进质谱以获得更广谱互作图谱候选。

免疫沉淀(IP)与免疫共沉淀(Co-IP)都依赖抗体—抗原特异性结合,但科学问题不同:IP 更像把目标抗原从复杂裂解液里钓出来;Co-IP 则强调在接近生理或接近天然复合物存在的条件下,看哪些蛋白与诱饵一起被抗体拉下来,因此更常用于蛋白相互作用与复合物组成的假说驱动或验证闭环。
关键要点对照
|
维度 |
IP |
Co-IP |
|---|---|---|
|
典型关注点 |
目标抗原是否存在 / 拷贝数相关实验 |
A-B 是否在物理上同属一复合物富集层级 |
|
体系前提 |
有效抗体 + 可溶性抗原可用表位 |
复合物相对稳定、裂解不过分破坏界面 |
|
常见下游 |
WB、凝胶、靶向质谱定量 |
WB、互作质谱批量候选 |
|
失败常见原因 |
抗原丰度极低、变性、遮蔽表位 |
复合物离散、瞬时互作、洗涤过强 |
流程上有何相同与不同?
共同骨架仍是:裂解 → 预处理 →抗体—固相亲和 →洗涤 →洗脱。Co-IP 往往对缓冲盐浓度、去污剂种类、蛋白酶抑制剂组合更加敏感——过度苛刻会洗掉弱互作猎物,过分温和则可能引入更多非特异附着。实际操作中,两套实验均需IgG/mock、细胞背景等对照来解释是否真的共富集。

相关服务
什么时候选 IP?
什么时候选 Co-IP?

局限性
共沉淀不是距离的物理尺子:洗涤剂、摩尔渗透压、剪切力都会扰动。互作≠共定位≠共通路,功能回补、Proximity、突变体结构域缺失、生化重组等往往需要跟进。

FAQ
1、Co-IP 阴性是否说明没有互作?
不一定。可能只是条件过严、瞬时互作、表位不可用或需要先交联固化。
2、只有 IP、没有 Co-IP 能发互作文章吗?
视证据强度和领域惯例而定;通常需要orthogonal数据支持。
3、Co-IP 后质谱需要做 SILAC 吗?
视假说:探索性可先 DDA;需严格区分特异/非特异时 SILAC/同位素更稳。
4、IP 可否用于膜蛋白?
可以,但更依赖去垢剂选择与溶解策略,后续质谱也需评估酶切覆盖率。
5、标签融合会不会改变互作?
可能。需评估标签位置、 linker 和功能对照。
结论
IP 更像目标抗原驱动的富集读出,Co-IP 则更直接地面向谁与谁共沉淀。实验设计应从科学问题倒退:若核心在互作拓扑与复合物组分,优先考虑 Co-IP + 严苛对照并可衔接质谱;若核心在诱饵丰度或小分子扰动读出,则从 IP/WB、靶向质谱梯度展开。善用 IgG/mock、SILAC IP-MS、交联补强可把结论从线索推进为可被同行接受的证据等级。
How to order?

